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最新技术
细胞治疗组合物及其制备方法和作为过敏性反应及自身免疫疾病治疗药物的应用
本发明提供了一种细胞治疗组合物,将I gE(CH-3)DC与CI K细胞共培养得到的I gE(CH-3)DC-CI K细胞,再与同种异体MSC细胞共培养制备得到细胞治疗组合物,本发明还提供了一种上述细胞治疗组合物在制备用于治疗过敏性反应及自身免疫疾病的细胞类药物中的应用。本发明运用I gE(CH-3)DCCI K+MSCs共培养细胞治疗过敏性反应及自身免疫疾病,通过实验证明会产生更为有利的结果,且不具有任何副作用。
一种原代脐带间充质干细胞的培养基及其应用
本发明细胞培养技术领域,具体涉及一种原代脐带间充质干细胞的培养基及其应用。本发明采用脐带间充质干细胞上清液和/或银胶菊内酯培养原代细胞,相较于传统组织块贴壁法,能有效缩短原代脐带间充质干细胞的制备时间,且保持其较好的细胞活率、表型及功能。
一种间充质干细胞无血清培养基
本发明属于生物医药领域,涉及一种间充质干细胞无血清培养基。本发明提供的无血清培养基成分包括基础培养基和添加成分,所述添加成分包括JNK通路抑制剂、ERK1/2通路抑制剂、P38MAPK通路抑制剂和氨基乙醇,所述的JNK通路抑制剂包括但不限于SP600125,ERK1/2通路抑制剂包括但不限于PD0325901,P38MAPK通路抑制剂包括SB202190、SB203580和BIRB796中的至少一种。本发明间充质干细胞的培养基,不含有FBS,无异源动物源性成分,降低细胞污染的几率,同时对MSC的扩增起到促进作用。
一种工程化外泌体纳米马达及其制备方法
本发明公开了一种工程化外泌体纳米马达及其制备方法,该工程化外泌体纳米马达由表面巯基化共价键合L-精氨酸的两性离子聚合物或负载L-精氨酸的碗状介孔硅纳米材料作为一氧化氮(NO)驱动基体,并将其用于工程化修饰外泌体。本发明的工程化外泌体纳米马达制备方法简单高效,具有优异的生物相容性、在炎症及活性氧微环境具有主动运动能力,可以有效实现外泌体精准靶向病灶部位、修复受损部位,使得外泌体在作为药物载体实现在病患深处的药物递送,赋予其自主运动能力,在生物医药领域具有广阔的应用前景。
一种脂肪源性干细胞的培养方法
本发明涉及生物干细胞培养技术领域,特别是涉及一种脂肪源性干细胞的培养方法,包括:将脂肪块与消化液震荡消化,吸取上层脂肪细胞液加入培养基中密封离心,再加入培养基吹打细胞,即得脂肪源性干细胞悬液;滴加培养基使得培养瓶的顶部润湿,将脂肪源性干细胞悬液接种至已润湿的培养瓶的顶部,晃动培养瓶使得脂肪源性干细胞悬液与培养瓶的顶部接触,将培养瓶翻转180°,使得脂肪源性干细胞悬液铺到培养瓶的底面,恒温培养,即可。本发明解决了现有技术中组织贴壁法中由于脂肪油滴阻碍细胞贴壁从而导致细胞贴壁率低和细胞提取效率低的问题,利用培养瓶亲油的特性,通过预先在顶部吸附脂肪油滴,提高细胞贴壁率和细胞提取效率。
一种含干细胞外泌体的生物墨水及其制造方法
本发明提供了一种生物墨水及其制造方法,以及使用生物墨水通过3D打印制造的生物支架,该生物墨水包含甲基丙烯酸酐明胶(gelatin methacryloyl,GelMA)、氧化的透明质酸(oxidized hyaluronic acid,OHA)、多巴胺修饰的透明质酸(dopamine conjugated hyaluronic acid,HA-DA)、软骨脱细胞基质、和外泌体。
一种用于治疗骨损伤的生物墨水及其制造方法
本发明提供了一种生物墨水及其制造方法,以及使用生物墨水通过3D打印制造的生物支架,该生物墨水包含明胶或明胶衍生物、透明质酸或透明质酸衍生物、脱细胞基质、和外泌体。
一种骨骼组织单细胞悬液的制备方法
本发明公开了一种骨骼组织单细胞悬液的制备方法,1)配制试剂与培养基,2)组织预处理,3)组织初步消化解离,4)组织二次彻底消化,5)μm细胞过滤器过滤,6)获取目的组织单细胞悬液;7)测活细胞得率,本发明制备骨骼组织单细胞悬液的方法,能够实现低成本、快速、高效获得骨骼组织单细胞悬液,并保证解离的细胞保持良好活力,可应用于大范围的动物骨骼细胞的解离、分离纯化以及细胞系的建立,为动物单细胞、基因功能及遗传育种研究提供重要参考资料。
一种酶分消化结合组织块培养分离成骨细胞的方法
本发明提供一种酶分消化结合组织块培养分离成骨细胞的方法,包括以下步骤包括以下步骤:S1、前期准备:取七日龄以内的颅骨组织,清洗后将颅骨组织剪碎成组织块;S2、酶分消化:将组织块置于离心管中,通过胰蛋白酶和I型胶原酶分步对组织块进行消化,直至组织块松散成胡絮状;S3、细胞培养:向离心管内加入培养液后静置,每隔1-3天采取半换液方式进行换液,直至细胞从组织块周边生长出来,再更换培养液并废弃组织块;S4、细胞纯化:通过差速贴壁法去除步骤S3中离心管中的成纤维细胞,即可得到纯化的成骨细胞。本发明使用的培养方法使分离的成骨细胞的细胞纯度相比于对比例大幅度得到提升,且同时细胞培养所需的时间也大大缩短。