一种基于等温扩增-CRISPR/Cas12a技术检测弓形虫的试剂盒及其应用
技术领域
本发明属于寄生虫检测
技术领域
,具体涉及一种基于等温扩增-CRISPR/Cas12a技术检测弓形虫的试剂盒及其应用。背景技术
刚地弓形虫(Toxoplasma gondii Nicolle&Manceaux,1908)是由法国学者Nicolle和Manceaux在突尼斯刚地梳趾鼠的肝脾单核细胞中发现,因其滋养体呈弓形,故简称为弓形虫或弓形体。该虫是一种专性细胞内寄生性原虫,可感染全世界约三分之一的人群及几乎所有的温血动物。猫科动物通常在感染弓形虫后会排泄大量的卵囊,这些卵囊会伴随粪便进入环境并在一定条件下发展成为感染性的孢子化卵囊,从而在环境中造成水源、土壤、瓜果和蔬菜等的污染。人或动物有可能在活动过程中接触被弓形虫卵囊污染的土壤或摄取被卵囊污染的食物或水源而感染。健康的人感染弓形虫后通常处于阴性感染状态,而免疫缺陷的患者感染后,会不同程度地损伤大脑、心脏、眼底等部位,甚至危及生命。此外,孕妇如果受到感染,会通过胎盘经垂直传播给胎儿,导致流产、死胎和畸胎,甚至胎儿会在生长过程中表现出精神疾病以及运动障碍等。
目前弓形虫的实验室诊断方法主要有显微检测、免疫学以及分子生物学三种方法。显微检测技术是一种传统的检测寄生虫的方法。但该方法主要依靠人肉眼识别,因此不仅工作量大而且受工作人员的经验及专业程度影响较大。免疫学诊断方法是诊断弓形虫的重要方法之一,其中包括酶联免疫吸附试验(ELISA)、间接血凝试验(IHA)、间接荧光免疫试验(IFA)、染色试验(DT)等。虽然这些诊断方法具有特异性高和操作简便优点,但同时也存在一些缺点例如敏感性不高以及不能对早期感染进行及时检测。
近年来随着分子生物学的不断发展,分子生物学检测技术也随之应用于弓形虫的分子检测中,例如聚合酶链式反应(PCR)、实时荧光定量PCR、套式PCR等,它们都具有特异性强、灵敏度高等优点。但是,大部分情况下PCR都需要专业的仪器设备和相关技术人员,因此限制了其推广。此外,这些分子检测技术还存在一些弊端,比如成本较高、耗时耗力、操作复杂等。虽然现有技术还开发了新型的检测手段,例如基于CRISPR的检测技术,但是对弓形虫检测而言缺乏特异性强的检测靶点。
发明内容
有鉴于此,本发明的目的在于提供一种用于特异性检测弓形虫的crRNA,具有较强弓形虫核酸结合特异性。
本发明的目的还在于提供一种基于等温扩增-CRISPR/Cas12a技术检测弓形虫的试剂盒及其应用,具有操作简便,快速,且检测灵敏高的特点。
本发明提供了一种用于特异性检测弓形虫的crRNA,所述crRNA的核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。
本发明提供了一种基于等温扩增-CRISPR/Cas12a技术检测弓形虫的试剂盒,包括以下组分:
所述crRNA、Cas12a蛋白和荧光报告基团标记的ssDNA。
本发明提供了所述crRNA或所述试剂盒在检测环境中弓形虫中的应用。
优选的,所述环境包括环境土壤以及水源。
优选的,所述弓形虫DNA包括弓形虫卵囊DNA。
本发明提供了基于所述试剂盒检测环境中弓形虫的方法,包括以下步骤:
1)提取环境样品中总DNA;
2)以步骤1)提取的总DNA为模板进行等温扩增,得到扩增产物;
3)将crRNA和Cas12a蛋白混合,孵育,得到核酸蛋白复合物;
4)将所述核酸蛋白复合物与所述扩增产物和荧光报告基团标记的ssDNA溶液混合,孵育,得到反应产物;
5)将所述反应产物测定荧光强度,根据荧光强度的有无判断环境样本中是否含有弓形虫:当检测到荧光强度信号时,表明环境样本中含有弓形虫,反之则不含。
优选的,步骤3)中crRNA和Cas12a蛋白的摩尔比为1:0.8。
优选的,步骤4)中所述核酸蛋白复合物、所述扩增产物和荧光报告基团标记的ssDNA溶液的体积比为1:1:1;
所述荧光报告基团标记的ssDNA溶液的浓度为1μM。
优选的,步骤2)中所述等温扩增包括重组酶介导扩增、环介导等温扩增、依赖核酸序列扩增或重组酶聚合酶扩增。
优选的,所述环境样本中弓形虫的浓度不低于100copies/μL。
本发明提供的用于特异性检测弓形虫的crRNA,核苷酸序列如SEQ ID NO:1所示。所述crRNA仅与弓形虫核酸特异性结合,而与新孢子虫、隐孢子虫、微孢子虫、芽囊原虫、艾美耳球虫、犬弓手蛔虫无交叉反应,表明crRNA具有较高的特异性,为准确鉴定弓形虫奠定了基础。
本发明还提供了一种基于等温扩增-CRISPR/Cas12a技术检测弓形虫的试剂盒,Cas12a在通过crRNA识别靶标序列(ssDNA或者dsDNA)后被激活,激活后的Cas12a除了靶向切割靶标序列外,还具有“附带”切割能力,能够切割任意单链DNA序列。基于Cas12a的这一特性,人们通过设计靶向病原微生物部分基因序列的crRNA,以FQ-ssDNA序列来指示检测样品中是否含有靶标序列。若不含靶标序列,在490nm激光照射下溶液不会发出荧光;若存在靶标序列,则会发出荧光。基于RAA-CRISPR/Cas12a技术可在较低温度(体温)下对弓形虫的核酸进行检测,整个过程只需1个小时左右,并且只需要一台便携式荧光检测仪即可或用肉眼直接在紫外灯光下进行观察。与传统的PCR方法相比,大大缩短了时间,基于以上特点,该技术特别适合于基层单位和现场检测。同时Cas12a的附属切割活性也起到了信号放大作用,所以RAA-CRISPR/Cas12a技术对弓形虫的检测敏感性非常高,达到了100copies/μL。此外,crRNA引导的Cas蛋白激活过程是一种序列特异性的识别过程,所以非特异性扩增产物不会激活Cas蛋白的活性,这就决定了该试剂盒的检测特异性,与新孢子虫、隐孢子虫、微孢子虫、芽囊原虫、艾美耳球虫、犬弓手蛔虫无交叉反应。
附图说明
图1为RAA-CRISPR/Cas12a技术检测环境土壤样品的结果,其中横坐标表示发射波长;纵坐标表示荧光强度;Positive sample表示诊断的样品为阳性,Negative sample表示诊断样品为阴性;
图2为本发明实施例中基于RAA-CRISPR/Cas12a技术的检测试剂盒的特异性评估结果;其中横坐标表示发射波长;纵坐标表示荧光强度;不同颜色代表不同的寄生虫;NC阴性对照;Average表示除T.gondii以外其它寄生虫的平均荧光值;T.gondii:弓形虫;C.parvum:隐孢子虫;N.caninum:新孢子虫;Microsporidium:微孢子虫;Blastocystis:芽囊原虫;E.tenella:艾美耳球虫;T.canis:犬弓首蛔虫;
图3为本发明实施例中RAA-CRISPR/Cas12a敏感性评估结果,横坐标表示不同浓度梯度的质粒;纵坐标表示相对荧光强度;NC代表阴性对照;****表示差异极显著(P<0.001);***表示差异显著(P<0.01);ns表示差异不显著。
具体实施方式
本发明提供了一种用于特异性检测弓形虫的crRNA,所述crRNA的核苷酸序列如SEQ ID NO:1(5′UAAUUUCUACUAAGUGUAGAUCACCCUCCAGGAAAAGCAGCCA3′)所示。所述crRNA仅能与弓形虫核苷酸序列发生特异性结合,而其他种类寄生虫的核苷酸序列不能结合,具有较高的特异性。
本发明提供了一种基于等温扩增-CRISPR/Cas12a技术检测弓形虫的试剂盒,包括以下组分:所述crRNA、Cas12a蛋白和荧光报告基团标记的ssDNA。
在本发明中,在crRNA识别靶标序列(弓形虫核酸序列)后,Cas12a被激活,激活后的Cas12a除了靶向切割靶标序列外,还具有“附带”切割能力,能够切割任意单链DNA序列,体系中添加FQ-ssDNA,以FQ-ssDNA为报告试剂,来指示检测样品中是否含有靶标序列。若不含靶标序列,在490nm激光照射下溶液不会发出荧光;若存在靶标序列,则会发出荧光。
在本发明中,所述荧光报告基团标记的ssDNA包括5’端带有荧光基团,3’端带有淬灭基团。本发明对荧光报告基团的种类没有限制,采用本领域熟知的荧光报告基团即可。本发明对所述Cas12a蛋白的试剂浓度的来源均没有限制,提供本领域所熟知的蛋白浓度的蛋白来源即可。在本发明实施例中,所述荧光报告基团标记的ssDNA为6FAM-CCGGAAAAAAAAAAAACCGG-BHQ1(SEQ ID NO:2)。
本发明提供了所述crRNA或所述试剂盒在检测环境中弓形虫中的应用。本发明所述应用适用于各种环境样本,为举例说明所述检测方法,本发明实施例以环境土壤为了加以说明,但这并不能理解为对本发明保护范围的限制。所述弓形虫优选包括弓形虫卵囊和弓形虫包囊以及速殖子。
本发明提供了基于所述试剂盒检测环境中弓形虫的方法,包括以下步骤:
1)提取环境样品中总DNA;
2)以步骤1)提取的总DNA为模板进行等温扩增,得到扩增产物;
3)将crRNA和Cas12a蛋白混合,孵育,得到核酸蛋白复合物;
4)将所述核酸蛋白复合物与所述扩增产物和荧光报告基团标记的ssDNA溶液混合,孵育,得到反应产物;
5)将所述反应产物测定荧光强度,根据荧光强度的有无判断环境样本中是否含有弓形虫:当检测到荧光强度信号时,表明环境样本中含有弓形虫,反之则不含。
本发明提取环境样品中总DNA。
在本发明中,所述环境样品优选包括预处理。所述预处理的过程是去除杂质和浓缩土壤。本发明对所述预处理的方法没有特殊限制,采用本领域所熟知的去除杂质和浓缩土壤的方法即可。鉴于所述试剂盒的检测灵敏度的要求,所述环境样本中弓形虫的浓度优选不低于100copies/μL。
在本发明中,提取环境样品中总DNA的方法优选采用粪便DNA提取试剂盒进行。
提取后,本发明以提取的总DNA为模板进行等温扩增,得到扩增产物。
在本发明中,所述等温扩增优选包括重组酶介导扩增(RAA)、环介导等温扩增(LAMP)、依赖核酸序列扩增(NASBA)或重组酶聚合酶扩增(RPA)。本发明以重组酶介导扩增(RAA)为了说明扩增土壤中总DNA的方法,但这并不能理解对本发明保护范围的限制。所述重组酶介导扩增用引物包括上游引物和下游引物。所述上游引物包括核苷酸序列如SEQ IDNO:3(5′-GAGCCACAGAAGGGACAGAAGTCG-3′)所示序列,所述下游引物包括核苷酸序列如SEQID NO:4(5′-CCTCCAGGAAAAGCAGCCAAGCCG-3′)所示序列。所述等温扩增的条件优选为39℃条件下进行。所述等温扩增的时间优选为25min。
本发明将crRNA和Cas12a蛋白混合,孵育,得到核酸蛋白复合物。
在本发明中,crRNA和Cas12a蛋白的摩尔比优选为1:0.6~1,更优选为1:1。所述孵育的温度优选为37℃,所述孵育的时间优选为15~35min,更优选20~30min。
得到核酸蛋白复合物、扩增产物后,本发明将所述核酸蛋白复合物与所述扩增产物和荧光报告基团标记的ssDNA溶液混合,孵育,得到反应产物。
在本发明中,所述核酸蛋白复合物、所述扩增产物和荧光报告基团标记的ssDNA溶液的体积比优选为1:1:1。所述荧光报告基团标记的ssDNA溶液的浓度优选为1μM。所述孵育的温度优选为37℃,所述孵育的时间优选为15~35min,更优选20~30min。
得到反应产物后,本发明将所述反应产物测定荧光强度,根据荧光强度的有无判断环境样本中是否含有弓形虫:当检测到荧光强度信号时,表明环境样本中含有弓形虫,反之则不含。
在本发明中,所述测定荧光强度优选在黑色酶标板中进行。所述测定荧光强度的波长优选为490nm。本发明对所述测定荧光强度的仪器没有特殊限制,采用本领域所熟知的荧光强度检测仪器即可。在本发明实施例中,在Thermo(VARIOSKAN LUX)多功能酶标仪上进行荧光强度检测。
下面结合实施例对本发明提供的一种基于等温扩增-CRISPR/Cas12a技术检测弓形虫的试剂盒及其应用进行详细的说明,但是不能把它们理解为对本发明保护范围的限定。
实施例1
(1)实验原料和仪器
原料:从杭州众测公司购买的基础型RAA试剂盒、OMEGA粪便试剂盒、LbCas12a蛋白;送公司合成的引物:RAA引物(SEQ ID NO:3和SEQ ID NO:4)、ssDNA-FQ(SEQ ID NO:2)、crRNA(SEQ ID NO:1)、10×NEB缓冲液、去离子水、寄生虫DNA(弓形虫、新孢子虫、隐孢子虫、微孢子虫、芽囊原虫、艾美耳球虫、犬弓手蛔虫)。
仪器:恒温水浴锅、200μL PCR管、离心管(50mL、1.5mL)、移液器、100mL小烧杯、Thermo(VARIOSKAN LUX)多功能酶标仪、黑色96孔板。
(2)方法
1、野外环境土壤样品检测
环境样品预处理:将5g经镜检含弓形虫卵囊的土壤样品放入100mL小烧杯中,加水至100mL,搅拌混匀,用筛网过滤并将筛网转移到50mL的离心管中;静置片刻后,将离心管中液体转移到另外一个50mL离心管中,弃去离心管底部的土壤杂质;4℃条件下4000r/min离心20min,然后倒掉上清;向离心管中加适量的水,充分混匀,4℃条件下4000r/min离心20min,倒掉上清,反复操作3次,这样可以彻底清洗浓缩的土壤。接着用粪便DNA提取试剂盒对浓缩的土壤进行核酸提取。以镜检不含弓形虫卵囊的土壤作为阴性对照样品。
2、RAA反应过程:利用RAA试剂盒对弓形虫靶标DNA进行核酸扩增得到大量的RAA反应产物。利用RAA检测试剂盒(购自杭州众测生物科技有限公司)检测:总反应体系50μL:41.5μL BufferA、2μL引物(SEQ ID NO:3)、2μL引物(SEQ ID NO:4)、2.5μL BufferB和弓形虫DNA 1μL。在39℃恒温水浴锅中反应20min。
3、Cas12a酶切方法步骤:
1)反应原料的准备:试剂制备(稀释)
(1)1×NEB缓冲液的配制方法:取100μL10×NEB缓冲液加入至900μL去离子水中得到1×NEB缓冲液。
(2)1μM crRNA溶液的配制方法:将合成的crRNA在12000rpm离心30s,直接在离心后的管子中加入125μL1ⅹNEB缓冲液,得到20μM crRNA,取8μL 20μM crRNA与152μL 1ⅹNEB缓冲液混合,得到1μM crRNA。
(3)800nM Cas12a溶液的配制方法:将100μM的Cas12a蛋白在12000rpm离心30s,取10μL 100μM Cas12a与40μL 1×NEB缓冲液混合,得到20μMCas12a溶液,取8μL 20μM Cas12a与152μL 1×NEB缓冲液混合,得到1μMCas12a溶液,取128μL 1μM Cas12a与32μL 1×NEB缓冲液混合,得到800nM Cas12a溶液。
(4)1μM ssDNA-FQ溶液配制方法:取10μL 100μM ssDNA-FQ与40μL1×NEB缓冲液混合,得到20μM ssDNA-FQ溶液,取10μL 20μM ssDNA-FQ+190μL 1×NEB缓冲液混合,得到1μMssDNA-FQ溶液。
2)检测步骤:
将20μL 800nM Cas12a和20μL 1μM CrRNA混合后放入37℃水浴锅中反应20分钟。
将上述反应物与20μL方法1中所述的RAA反应产物以及20μL 1μMssDNA-FQ混合后放入37℃水浴锅中反应30分钟。
反应结束后,将反应产物加入到黑色96孔板中,然后在Thermo(VARIOSKAN LUX)多功能酶标仪上在490nm下进行荧光强度检测。
结果见图1。由图1可知,阳性土壤DNA样本能够得到一条荧光信号明显的曲线,而阴性土壤DNA样本得到一条无荧光信号的直线,说明本发明提供的方法可以准确检测土壤中弓形虫DNA是否存在。
实施例2
利用弓形虫以及其他寄生虫(新孢子虫、隐孢子虫、微孢子虫、芽囊原虫、艾美耳球虫、犬弓手蛔虫)的DNA对实施例1采用的RAA-CRISPR/Cas12a的检测方法进行特异性评估。
结果见图2。由图2结果可知,RAA-CRISPR/Cas12a的检测方法仅能对弓形虫DNA得到荧光强度信号,而对其他种类寄生虫DNA无法得到明显荧光强度信号,说明不能发生交叉反应。所述检测方法具有对弓形虫DNA特异性检测的特点。
实施例3
利用不同浓度梯度的弓形虫重组质粒对RAA-CRISPR/Cas12a的检测方法进行灵敏度检测的评估。
重组质粒的构建方法包括以下步骤:针对弓形虫特异性529bp序列设计引物PF-529(GGAGGAAGACGAAAGTTG,SEQ ID NO:5)和PR-529(ACAGTGCATCTGGATTCC,SEQ ID NO:6)。PCR扩增体系如下:12.5μL Pre mix-Tag酶,1.5μL引物PF-529,1.5μL引物PR-529,2μL弓形虫DNA,7.5μL ddH2O。反应条件:94℃预变性5min,94℃30s,57℃30s,72℃1min,35循环,最后72℃延伸5min。
经PCR扩增后,将PCR产物与pMD19-T载体连接,转化至大肠杆菌DH5α中,挑取阳性克隆,提取质粒,成功构建阳性质粒。
将上述构建的阳性质粒进行10倍浓度稀释,得到101~1010拷贝/mL的梯度浓度的弓形虫重组质粒。采用实施例1记载的方法对梯度浓度的弓形虫重组质粒进行检测。
结果见图3。由图3可知,所述检测方法的检测灵敏度为100copies/μL,说明所述检测方法能够诊断极微量的弓形虫DNA。
由上述实施例结果可知,本发明的试剂盒及检测方法具有快速、灵敏、简便和准确等优点,整个检测过程可在较低温度下快速进行,其灵敏度在100copies/μL,能够诊断极微量的弓形虫DNA。该方法特异性良好,与其他寄生虫没有交叉反应。而对野外样品的检测结果可以说明利用该方法对529bp序列产生明显信号,证明RAA-CRISPR/Cas12a方法可以应用于环境中弓形虫卵囊DNA的检测。
以上所述仅是本发明的优选实施方式,应当指出,对于本技术领域的普通技术人员来说,在不脱离本发明原理的前提下,还可以做出若干改进和润饰,这些改进和润饰也应视为本发明的保护范围。
序列表
<110> 中国农业科学院兰州兽医研究所
<120> 一种基于等温扩增-CRISPR/Cas12a技术检测弓形虫的试剂盒及其应用
<160> 6
<170> SIPOSequenceListing 1.0
<210> 1
<211> 43
<212> RNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 1
uaauuucuac uaaguguaga ucacccucca ggaaaagcag cca 43
<210> 2
<211> 20
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 2
ccggaaaaaa aaaaaaccgg 20
<210> 3
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 3
gagccacaga agggacagaa gtcg 24
<210> 4
<211> 24
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 4
cctccaggaa aagcagccaa gccg 24
<210> 5
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 5
ggaggaagac gaaagttg 18
<210> 6
<211> 18
<212> DNA
<213> 人工序列(Artificial Sequence)
<400> 6
acagtgcatc tggattcc 18