胃癌原代细胞的培养基及培养方法
技术领域
本发明涉及生物
技术领域
，具体涉及一种用于胃癌原代细胞的快速扩增的培养基及培养方法，及其在药物的疗效评估和筛选中的应用。背景技术
胃癌是最常见的恶性消化道肿瘤，早期胃癌患者无明显症状，因此多数胃癌患者确诊时已发展至中晚期。胃癌细胞对化疗药物敏感性较差，因此其化疗效果差，导致五年生存率低。近年来，随着科学技术的发展，胃癌诊疗技术不断提高，尤其是手术、内镜技术、放化疗、靶向治疗等综合治疗方式的进步，胃癌的治疗效果有所提升，但对于晚期及伴转移病灶的胃癌患者，综合治疗的预后仍不理想。流行病学调查分析显示，在我国胃癌发病例数和死亡例数分别占全球胃癌发病和死亡的42.6％和45.0％，在全球183个国家中位于发病率第5位、死亡率第6位。胃癌仍是严重危害中国居民健康的主要疾病之一，降低我国胃癌的发病率和死亡率越来越成为我们必须直面的重大公共卫生问题。
现有的体外培养的胃癌细胞系主要通过将正常细胞长期培养而自发永生化或者转染促使正常细胞永生化的癌基因获得。传统方法建立的细胞系依然是细胞、分子和癌生物学研究的主要支柱。但是，这些方法改变了细胞的遗传背景，长期培养的细胞系，也容易造成基因组不稳定，可能导致肿瘤细胞系的表型和体内肿瘤细胞发生人为的改变。这些细胞系中通常缺乏原发肿瘤的复杂异质性，从而限制了这些细胞系对于预测肿瘤细胞反应的应用，影响胃癌的科学研究和药物研发的准确性。另外，从胃癌组织获得的细胞培养成癌细胞的过程中，常规培养方法较难得到癌细胞，培养过程中存在容易被成纤维细胞干扰，形成的克隆无法传代等问题，限制了人胃癌原代细胞的应用。
2017年Xuefeng Liu等人使用辐照的小鼠成纤维细胞和Rho相关激酶抑制剂(Y-27632)来扩增上皮来源的细胞，该体系具有无需基因操作就能实现上皮来源细胞无限增长的能力(Xuefeng Liu等，Conditional reprogramming and long-term expansion ofnormal and tumor cells from human biospecimens.Nat.Protoc.2017,12,439)。但是，Xuefeng Liu等人建立的方法的培养周期较长，不能实现细胞的快速扩增，限制了该技术的应用。
发明内容
为了解决上述技术问题，本发明提供了一种用于在体外快速扩增胃癌原代细胞的培养基及培养方法。
本发明的一个方面在于提供一种胃癌原代细胞的培养基，所述培养基包含初始培养基、Rho蛋白酶抑制剂、抗生素、胰岛素、非必需氨基酸、氢化可的松、霍乱毒素、谷氨酰胺、胎牛血清(FBS)、以及选自B27添加剂和N2添加剂中的至少一种的添加剂。
所述初始培养基选自DMEM/F12、DMEM、F12或RPMI-1640。
其中，选自B27添加剂和N2添加剂中的至少一种的添加剂优选为B27添加剂、或者B27添加剂和N2添加剂。
(1)Rho蛋白激酶抑制剂选自Y27632、羟基法舒地尔和GSK429286A中的一种或多种，当选自Y27632时，浓度范围为2.5～40μM，优选为10～20μM；当选自羟基法舒地尔时，浓度范围为2～32μM，优选为4～16μM；当选自GSK429286A时，浓度范围为2～32μM，优选为4～16μM；
(2)抗生素选自链霉素/青霉素、两性霉素B和Primocin中的一种或多种，当选自链霉素/青霉素时，链霉素浓度范围为25～400μg/mL，优选为50～200μg/mL，更优选为200μg/m，青霉素浓度范围为25～400U/mL，优选为50～200U/mL，更优选为200U/mL；当选自两性霉素B时，浓度范围为0.25～4μg/mL，优选为0.5～2μg/mL；当选自Primocin时，浓度范围为25～400μg/mL，优选为50～200μg/mL；
(3)胰岛素的浓度范围为5～20μg/mL，优选为10～20μg/mL；
(4)非必需氨基酸为选自甘氨酸、丙氨酸、天冬酰胺、天冬氨酸、谷氨酸、脯氨酸和丝氨酸中的一种或多种，非必需氨基酸的总浓度范围为50～800μM，优选为100～400μM；
(5)氢化可的松的浓度范围为0.1～1.6μg/mL，优选为0.2～0.8μg/mL；
(6)霍乱毒素的浓度范围为0.1～0.4nM，优选为0.1～0.2nM
(7)谷氨酰胺的浓度范围为1～8mM，优选为1～4mM；
(8)胎牛血清(FBS)相对于培养基的体积比为1:5～1:40；
(9)B27添加剂的浓度范围体积比为1:25～1:400，优选为1:25～1:200；
(10)N2添加剂相对于培养基的体积比为1:25～1:400，优选为1:25～1:100。
本发明还提供一种胃癌原代细胞的培养方法。本发明的胃癌原代细胞的培养方法中，使用本发明的胃癌原代细胞培养基对胃癌原代细胞进行培养。
本发明的胃癌原代细胞的培养方法中，按照细胞密度2～3×104个/cm2加入滋养细胞。滋养细胞为辐照后的NIH-3T3细胞，辐照源为X射线或者γ射线，辐照剂量为20～50Gy。
本发明的胃癌原代细胞培养方法还包括以下步骤：
1.胃癌原代细胞的分离
1.1对组织样本、例如内镜标本，用组织清洗液冲洗后加入组织消化液置于恒温摇床(知楚仪器ZQLY-180N)中进行消化，例如，利用8～14毫升、优选12毫升组织消化液进行消化；消化温度范围为4摄氏度～37摄氏度，优选为37摄氏度；消化转速范围为200rpm～350rpm，优选为300rpm；
1.2消化后取出观察，若未见明显组织块即可终止消化，否则继续消化，直至消化充分，消化时间范围为4～8小时，优选为6小时；
1.3消化完成后取出，离心后弃去上清液，加入含血清初始培养基重悬终止消化，离心转速范围为1200～1600rpm，优选为1500rpm；离心时间范围为2～6分钟，优选为5分钟，其中，含血清初始培养基例如可以使用含10％胎牛血清的DMEM/F12培养基。
2.使用本发明的胃癌原代细胞培养基进行培养
将上述步骤1中获得的胃癌原代细胞用本发明的胃癌原代细胞培养基重悬并计数，按照细胞密度5～10×104个/cm2种入培养皿中，同时按照细胞密度2～3×104个/cm2加入滋养细胞，培养5～7天后按照细胞密度0.5～1×104个/cm2补充加入滋养细胞，直至培养皿中细胞长满85％以上可进行消化传代。
其中，步骤1中所述的组织清洗液的配方为：DMEM/F12基础培养基含100～200μg/mL Primocin、2％青霉素/链霉素溶液；步骤1中所述的组织消化液的配制方法为：将1～2mg/mL胶原酶Ⅱ、1～2mg/mL胶原酶Ⅳ、50～100U/mL脱氧核糖核酸Ⅰ、0.5～1mg/mL透明质酸酶、1～3mM氯化钙、1～2％牛血清白蛋白溶于体积比1:1的HBSS和RPMI-1640中；步骤2中所述的滋养细胞例如可以为辐照后的NIH-3T3细胞，辐照源为X射线或者γ射线，优选为γ射线，辐照剂量为20～50Gy，优选为30Gy。
本发明还提供一种胃癌疾病的药物筛选方法，其包括以下步骤：
(1)使用本发明的胃癌原代细胞的培养方法培养胃癌原代细胞，用于药物筛选；
(2)选定需要检测的药物并按照所需浓度梯度进行稀释；
(3)对(1)中培养得到的细胞添加稀释后的所述药物；
(4)进行细胞活性测试。
发明效果
(1)提高胃癌原代细胞培养的成功率，成功率达到85％以上；
(2)保证体外原代培养的胃癌原代细胞能够保持病人的病理特性；
(3)所培养的原代胃癌细胞不受成纤维细胞、脂肪细胞等间质细胞的干扰；
(4)扩增效率高，只要有104级别的细胞数量就可在两周左右时间内成功扩增出106数量级的胃癌原代细胞，扩增出的胃癌原代细胞还可以连续传代；
(5)培养成本可控：培养基无需加入价格昂贵的Wnt激动剂、R-spondin家族蛋白、BMP抑制剂、FGF10等因子，是对已有胃癌原代细胞培养基的简化和改进；
(6)所述技术培养获得的胃癌原代细胞数量大，均一化程度高，适合高通量筛选新候选化合物和为病人提供高通量药物体外敏感性功能测试。
附图说明
图1为表示胃癌原代细胞培养基中不同添加因子组合对胃癌原代细胞增殖的影响的图。
图2为表示胃癌原代细胞培养基中添加因子浓度对胃癌原代细胞增殖的影响的图。
图3为利用显微镜观察使用本发明的胃癌原代细胞培养基培养得到的胃癌原代细胞的照片。
图4为对使用本发明的胃癌原代细胞培养基培养得到的胃癌原代细胞进行瑞氏吉姆萨染色鉴定的结果。
图5为对使用本发明的胃癌原代细胞培养基培养得到的胃癌原代细胞进行细胞免疫荧光染色的结果。
图6为使用本发明的胃癌原代细胞培养基对胃癌原代细胞进行培养的细胞生长曲线。
图7为使用本发明的胃癌原代细胞培养基和现有培养基对胃癌原代细胞进行培养的比较结果。
图8为使用本发明的胃癌原代细胞培养基培养胃癌细胞，并将不同代数细胞用于药物筛选的结果。
具体实施方式
为更好理解本发明，下面结合实施例及附图对本发明作进一步描述，以下实施例仅是对本发明进行说明而非对其加以限定。
实施例1胃癌原代细胞培养基中各添加因子对胃癌原代细胞增殖的影响
(1)胃癌原代细胞培养基的配制
首先配制基础培养基。基础培养基的配方为：DMEM/F12培养基(购自Corning公司)+10μM Y27632(购自MCE公司)+100μg/mL Primocin(购自InvivoGen公司)。
在基础培养基内分别加入不同种类的添加剂(参见表1)配制成含有不同添加成分的胃癌原代细胞培养基。
(2)胃癌原代细胞的分离
1样品选择
胃癌实体瘤组织样品(术中/内镜)由专业医疗机构的专业医务人员从患者获取，患者均签署了知情同意书。术中样本2个黄豆粒大小，内镜样本米粒大小；采用商品化组织保存液(生产厂家：Miltenyi Biotec)存储运输。
2材料准备
准备：30Gy剂量γ射线照射过的NIH 3T3细胞(购自ATCC)；15mL无菌离心管、移液枪、10mL移液管、无菌枪头等表面消毒后放入超净工作台中紫外照射30min；提前30min从4℃冰箱取出基础培养基，提前30min从-20℃冰箱取出组织消化液，其中：
组织消化液：DMEM/F12培养基、胶原酶Ⅱ(2mg/mL)、胶原酶Ⅳ(2mg/mL)、DNA酶(50U/mL)、透明质酸酶(0.75mg/mL)、氯化钙(3.3mM)、BSA(10mg/mL)。
以上提及的胶原酶Ⅱ购自Sigma公司；胶原酶Ⅳ购自Sigma公司；DNA酶购自Sigma公司；透明质酸酶购自Sigma公司；氯化钙购自生工生物工程(上海)股份有限公司；BSA购自Biofroxx公司。
3样品分离
3.1超净台中取组织于培养皿中，去除带血液的组织，用基础培养基冲洗2次，将组织转移至另一培养皿中用无菌手术刀进行机械分离，使组织块至1*1*1mm3大小；
3.2将切割后的术中或内镜组织吸至15mL离心管中，加入5mL基础培养基，混匀，于1500rpm离心4min；
3.3弃上清，按1:1比例加入基础培养基和消化酶(注：消化酶的加入量是1g肿瘤组织使用约10mL消化酶)，标记样品名称及编号，用封口膜密封，在37℃下于300rpm摇床中进行消化，期间每1h观察消化是否完成，判断依据无肉眼可见的颗粒物；
3.4消化完成后，经100μm滤网过滤掉未消化的组织团块，滤网上的组织团块用基础培养基冲洗入离心管中以减少细胞损失，于25℃下1500rpm离心4min；
3.5弃上清，观察是否有血细胞，若有血细胞，加10mL血细胞裂解液(购自Sigma公司)，混匀，4℃裂解20min，期间颠倒混匀一次，25℃，1500rpm离心4min；
3.6弃上清，加入2mL基础培养基重悬细胞，备用。
4细胞计数及处理
4.1镜下观察：移取少量重悬细胞平铺于培养皿中，显微镜下观察癌细胞密度和形态；
4.2活细胞计数：取重悬的细胞悬液10μL，加入80μLGM-1培养基，10μL台盼兰染液(生产厂家：生工生物工程(上海)股份有限公司)充分混合后，取10μL加入血球计数板(生产厂家：上海求精生化试剂仪器有限公司，规格：79mm*39mm*13mm)，显微镜下数四个大方格内的细胞总数，细胞浓度(细胞/mL)＝4个大方格内细胞总数/4*10 4*10(稀释倍数)。死细胞可被染成蓝色，活细胞不着色。计数200个细胞，计算出活的大细胞(细胞粒径>10μm)百分率＝活细胞数/总细胞数*100％。
(3)胃癌原代细胞的培养
将表1中不同成分的培养基按500μl/孔体积加入48孔板内。将按照上述步骤(2)从三例胃癌组织(样本1、样本2、样本3)分离得到胃癌原代细胞以1×104个/孔的细胞密度接种在48孔培养板内，同时按照细胞密度2×104个/cm2加入经γ射线辐照(辐照剂量30Gy)的NIH-3T3细胞。以37℃、5％CO2浓度的条件进行培养。培养开始后每4天进行一次培养基的更换。培养10天后，进行细胞计数。其中，作为实验对照，使用未添加任何添加剂的基础培养基，将实验结果示于表1。
表1
序号
培养基添加剂种类
供应商
终浓度
促细胞增殖程度分级
1
N2
Gibco
1:50
+
2
表皮生长因子
R&D
20ng/ml
○
3
肝细胞生长因子
Peprotech
20ng/ml
○
4
碱性成纤维细胞生长因子
R&D
20ng/ml
○
5
R-spondin1
R&D
250ng/ml
○
6
R-spondin3
R&D
250ng/ml
○
7
前列腺素E2
Tocris
1μM
○
8
胰岛素
Peprotech
20μg/mL
+
9
人白血病抑制因子
Peprotech
100ng/ml
○
10
三碘甲状腺原氨酸
MCE
5nM
－
11
B27
Gibco
1:50
+
12
A8301
MCE
500nM
○
13
SB202190
MCE
500nM
○
14
烟酰胺
Sigma
10mM
○
15
N-乙酰半胱氨酸
Sigma
1.25mM
－
16
谷氨酰胺
GIBCO
4mM
+
17
霍乱毒素
Sigma
0.1nM
+
18
氢化可的松
Sigma
0.8μg/mL
+
19
非必需氨基酸
Corning
400μM
+
20
Noggin
R&D
100ng/ml
○
21
FBS
Excell
10％
+
其中，“+”表示与基础培养基相比，加入该添加剂的培养基对从胃癌组织分离出的胃癌原代细胞中的三例有促进增殖的作用；“－”表示添加该添加剂的培养基对从胃癌组织分离出的胃癌原代细胞中的至少两例显示有抑制增殖的作用；“○”表示添加该添加剂的培养基对从胃癌组织分离出的胃癌原代细胞中的至少两例的增殖没有明显的影响。
实施例2胃癌原代细胞培养基中不同添加因子的组合对胃癌原代细胞增殖的影响
根据表2中的成分配制不同添加因子组合的胃癌原代细胞培养基，考察不同添加因子组合对胃癌原代细胞的促增殖作用。
表2 不同组分培养基的配制(浓度为终浓度)
培养基
组分
基础培养基(BM)
DMEM/F12+10μM Y27632+100μg/mL Primocin
No.1
BM+20μg/mL胰岛素
No.2
No.1+0.8μg/mL氢化可的松
No.3
No.2+400μM非必需氨基酸
No.4
No.3+4mM谷氨酰胺
No.5
No.4+0.1nM霍乱毒素
No.6
No.5+10％FBS
No.7
No.6+1:50 N2添加剂
GM-1
No.6+1:50 B27添加剂
以上提及的FBS购自Excell公司。
按照实施例1的步骤(2)之3的方法从胃癌组织(样本4)获得胃癌原代细胞，将所获得的细胞悬液平均分成9份，1500rpm离心4分钟，离心后分别使用200微升BM、No.1～7号以及GM-1培养基重悬，分别按照活细胞密度1×104个/cm2接种于48孔板中(每孔1万细胞数)，随后按照细胞密度2×104个/cm2加入经γ射线辐照(辐照剂量30Gy)的NIH-3T3细胞，最后分别使用对应的培养基补齐48孔板中各孔体积至500微升，充分混匀。表面消毒后置于37℃、5％CO2培养箱(购自赛默飞)培养。直至48孔板中细胞长至85％以上，进行传代。
在培养第7天，取出48孔板，使用200微升0.05％胰蛋白酶(购自Gibco公司)润洗1分钟，吸去后再每孔加入250微升0.05％胰蛋白酶(购自Gibco公司)，置于37℃、5％CO2培养箱中反应10分钟，直至显微镜(Invitrogen公司EVOS M500)下能观察到细胞已经消化完全即终止消化，1500rpm离心4分钟后，弃上清，加入1毫升基础培养基重悬，使用流式图像计数仪(江苏卓微生物科技有限公司JIMBIO FIL)进行计数，得到细胞总数。将由分离自内镜组织样本50的胃癌原代细胞得到的结果示于图1。
根据图1的结果可知，与基础培养基相比，在使用上述No.1～No.7及GM-1培养基时，均能够不同程度地促进胃癌原代细胞的增殖。在使用含有Y27632、Primocin、胰岛素、氢化可的松、非必需氨基酸、谷氨酰胺、霍乱毒素、FBS、B27添加剂的胃癌原代细胞培养基(即GM-1培养基)培养胃癌原代细胞时，增殖效果明显提高。
实施例3所添加的因子的不同浓度对胃癌原代细胞增殖的影响
按照实施例1中步骤(2)之3的方法从内镜组织(样本5、样本6、样本7、样本8和样本9)分离并获得胃癌原代细胞，并使用实施例2中的GM-1培养基培养所获得的胃癌原代细胞，按照活细胞密度1×104个/cm2接种于12孔板中(每孔4.5万细胞数)，按照细胞密度2×104个/cm2加入经γ射线辐照(辐照剂量30Gy)的NIH-3T3细胞，混匀。表面消毒后置于37℃、5％CO2培养箱(购自赛默飞)培养。待细胞扩增至85％，取出12孔板，使用200微升0.05％胰蛋白酶(购自Gibco公司)润洗1分钟，吸去后再每孔加入500微升0.05％胰蛋白酶(购自Gibco公司)，置于37℃、5％CO2培养箱中反应10分钟，直至显微镜(Invitrogen公司EVOS M500)下能观察到细胞已经消化完全即终止消化，1500rpm离心4分钟后，弃上清，加入1毫升基础培养基重悬，使用流式图像计数仪(江苏卓微生物科技有限公司JIMBIO FIL)进行计数，得到细胞总数。所得细胞用于以下培养实验。
接着，配制以下9种配方培养基进行实验：
配方1：实施例2中的GM-1培养基组分中不含非必需氨基酸；
配方2：实施例2中的GM-1培养基组分中不含谷氨酰胺；
配方3：实施例2中的GM-1培养基组分中不含B27；
配方4：实施例2中的GM-1培养基组分中不含胰岛素；
配方5：实施例2中的GM-1培养基组分中不含霍乱毒素；
配方6：实施例2中的GM-1培养基组分中不含氢化可的松；
配方7：实施例2中的GM-1培养基组分中不含Y27632；
配方8：实施例2中的GM-1培养基组分中不含FBS；
配方9：实施例2中的GM-1培养基。
分别使用上述配方1～9和实施例2中GM-1培养基来稀释上述消化后的细胞悬液，按照每孔2万细胞，500微升体积种入24孔板中。
在使用配方1的培养基时，按照终浓度分别为800μM、400μM、200μM、100μM、50μM配制5个浓度梯度的非必需氨基酸，在接种有原代细胞的24孔板中分别添加配制好的非必需氨基酸每孔500微升；并使用配方1的培养基设置对照孔(BC)。
在使用配方2的培养基时，按照终浓度分别为8mM、4mM、2mM、1mM、0.5mM配制5个浓度梯度的谷氨酰胺，在接种有原代细胞的24孔板中分别添加配制好的谷氨酰胺每孔500微升；并使用配方2的培养基设置对照孔(BC)。
在使用配方3的培养基时，按照终浓度分别为1:400、1:200、1:100、1:50、1:25配制5个浓度梯度的B27添加剂，在接种有原代细胞的24孔板中分别添加配制好的B27添加剂每孔500微升；并使用配方3的培养基设置对照孔(BC)。
在使用配方4的培养基时，按照终浓度分别为40μg/mL、20μg/mL、10μg/mL、5μg/mL、2.5μg/mL配制5个浓度梯度的胰岛素，在接种有原代细胞的24孔板中分别添加配制好的胰岛素每孔500微升；并使用配方4的培养基设置对照孔(BC)。
在使用配方5的培养基时，按照终浓度分别为0.4nM、0.2nM、0.1nM、0.05nM、0.025nM配制5个浓度梯度的霍乱毒素，在接种有原代细胞的24孔板中分别添加配制好的霍乱毒素每孔500微升；并使用配方5的培养基设置对照孔(BC)。
在使用配方6的培养基时，按照终浓度分别为1.6μg/mL、0.8μg/mL、0.4μg/mL、0.2μg/mL、0.1μg/mL配制5个浓度梯度的氢化可的松，在接种有原代细胞的24孔板中分别添加配制好的氢化可的松每孔500微升；并使用配方6的培养基设置对照孔(BC)。
在使用配方7的培养基时，按照终浓度分别为40μM、20μM、10μM、5μM、2.5μM配制5个浓度梯度的Y27632，在接种有原代细胞的24孔板中分别添加配制好的Y27632每孔500微升；并使用配方7的培养基设置对照孔(BC)。
在使用配方8的培养基时，按照终浓度分别为1:40、1:20、1:10、1:5、1:2.5配制5个浓度梯度的FBS，在接种有原代细胞的24孔板中分别添加配制好的FBS每孔500微升；并使用配方8的培养基设置对照孔(BC)。
在使用配方9的培养基时，按照终浓度分别为1:400、1:200、1:100、1:50、1:25配制5个浓度梯度的N2添加剂，在接种有原代细胞的24孔板中分别添加配制好的N2添加剂每孔500微升；并使用配方9的培养基设置对照孔(BC)。
同时上述各孔加入1万个辐照后的NIH-3T3细胞作为滋养细胞。
待细胞扩增至24孔的85％左右消化计数，分别参比对照孔(BC)细胞数计算比值，将结果分别示于图2的(A)～(I)。图2中，比值为使用各培养基培养一代得到的细胞数与对应的对照孔培养一代得到的细胞数的比。比值大于1说明配制的含不同浓度因子的培养基促增殖效果优于对照孔培养基，比值小于1，则说明配制的含不同浓度因子的培养基促增殖效果较对照孔培养基促增殖效果弱。
如图2所示，非必需氨基酸浓度范围为50～800μM，浓度为400μM加入细胞增殖效果最明显；谷氨酰胺浓度范围为1～8mM，浓度为4mM加入细胞增殖效果最明显；B27浓度范围为1:25～1:400，浓度为1:50比例加入细胞增殖效果最明显；胰岛素浓度范围为5～20μg/mL，浓度为10μg/mL加入细胞增殖效果最明显；霍乱毒素浓度范围为0.1～0.4nM，浓度为0.1nM加入细胞增殖效果最明显；氢化可的松浓度范围为0.1～1.6μg/mL，浓度为0.8μg/mL加入细胞增殖效果最明显；Y27632浓度范围为2.5～40μM，浓度为10μM加入细胞增殖效果最明显；FBS浓度范围为1:5～1:40，浓度为1:10比例加入细胞增殖效果最明显；N2浓度范围为1:25～1:400，浓度为1:50比例加入细胞增殖效果最明显。
实施例4胃癌原代细胞培养及鉴定
按照实施例1的步骤(2)之3的方法从内镜组织样本(样本10)获得胃癌原代细胞，并使用实施例2中的GM-1培养基进行培养，所获得的胃癌原代细胞，按照活细胞密度1×104个/cm2接种于12孔板中(每孔4.5万细胞数)，按照细胞密度2×104个/cm2加入经γ射线辐照(辐照剂量30Gy)的NIH-3T3细胞，混匀。表面消毒后置于37℃、5％CO2培养箱(购自赛默飞)培养。
在第12天，使用显微镜(Invitrogen公司EVOS M500)观察培养得到的胃癌原代细胞，图3的(A)和(B)分别是4倍物镜和10倍物镜下拍摄得到的照片，细胞在镜下呈紧密排列，形态略不规则。
并且，在第12天，对所培养的细胞，使用200微升0.05％胰蛋白酶(购自Gibco公司)润洗1分钟，吸去后再每孔加入500微升0.05％胰蛋白酶(购自Gibco公司)，置于37℃、5％CO2培养箱中反应10分钟，直至显微镜(Invitrogen公司EVOS M500)下能观察到细胞已经消化完全即终止消化，1500rpm离心4分钟后，弃上清，加入500微升GM-1培养基重悬，对培养得到的胃癌原代细胞进行鉴定。
取100微升上述胃癌原代细胞悬液涂片进行瑞氏-吉姆萨染色鉴定。染色方法如下所述。
(1)细胞悬液涂片晾干，滴入1滴瑞氏-吉姆萨A液(购自贝索公司)，随后滴入3滴瑞氏-吉姆萨B液(购自贝索公司)，混匀后染色3分钟；
(2)流水冲洗，冲洗时不能先倒掉染液，应以流水冲去，以防有沉渣沉淀在标本上；
(3)干燥，显微镜(奥林巴斯公司CX41)下观察拍照。
图4表示体外培养后的胃癌原代细胞进行瑞氏吉姆萨染色鉴定的结果。图4的(A)和(B)分别为4倍物镜和10倍物镜下拍摄得到的照片，细胞核大且深染，符合癌细胞特征。
将该样本培养后的胃癌原代细胞进行免疫荧光染色。染色方法如下所述。
(1)爬片
将培养后的胃癌原代细胞种于细胞玻片(购自赛默飞公司)上，置于37℃、5％CO2培养箱培养，待细胞贴壁。
(2)固定
①PBS(购自上海生工)配制4％甲醛(购自Sigma公司)，4℃冰箱保存备用。
②细胞贴壁后，弃培养液，4％甲醛冰上固定细胞30分钟。PBS(购自上海生工)洗5分钟x 3次。
(3)透明(避光)
①配制透明液：PBS+0.3％H2O2(购自上海生工)+0.3％Triton X-100(购自上海生工)。
②透明：弃PBS，加入透明液，避光下，摇床(100rpm左右)透明30分钟，PBS洗5分钟x3次。
(4)封闭
使用PBS+0.3％Triton X-100配制5％BSA(购自上海生工)用于封闭，37℃封闭30分钟。
(5)一抗孵育
①配制PBS+0.3％Triton X-100用于稀释抗体，按照1:50比例稀释特异性抗体Pan-keratin、MUC1、P63和Napsina(抗体均购自CST公司)，弃封闭液，加入配制好的一抗稀释液，至4℃冰箱孵育过夜，其中，Pan-keratin上皮组织中高表达，MUC1在胃肠癌症中高表达，P63在鳞癌中高表达，Napsina在腺癌细胞中高表达。
②4℃取出，平衡至室温，37℃继续孵育1小时，PBS洗5分钟x3次。
(6)二抗孵育(避光)
配制PBS+0.3％Triton X-100用于二抗稀释，按照1:1000比例稀释激发光为488且种属为兔的荧光二抗(购自赛默飞公司)，常温避光孵育1h，PBS洗5分钟x 3次。
(7)DAPI染色(避光)
1:1000PBS稀释DAPI(购自Sigma公司)，常温避光染色5分钟，PBS洗5分钟x3次。显微镜(Invitrogen公司EVOS M500)下成像，拍照记录。
图5为体外培养后的胃癌原代细胞进行免疫荧光染色鉴定的结果，分别为10倍物镜下荧光拍照的图片。如图所示，Pan-keratin、MUC1和P63高表达，Napsina低表达，提示该样本为胃鳞癌，该结果和医院病理诊断结果一致。
实施例5胃癌原代细胞初次培养周期和细胞数统计及Population Doubling(PD)值计算
按照实施例1步骤(2)之3的方法从5例样本胃癌组织样本(样本11～15)获得胃癌原代细胞。对于所获得的胃癌原代细胞，使用实施例2中的GM-1培养基培养，按照活细胞密度1×104个/cm2将细胞接种在6孔板中并进行培养，待细胞扩增至85％后消化并计数，同时记录直至消化时培养的天数，将该直至消化时培养的天数作为一个培养周期。在该实验条件下持续培养，将扩增所得的细胞进行不同代数扩增，每一代进行消化后计数并记录相应培养的周期，根据公式Population Doubling(PD)＝3.32*log10(消化后细胞总数/初始种入细胞数)计算PD。如图6所示，横坐标表示细胞培养的天数，纵坐标是累计的细胞增殖倍数，表示细胞在培养周期内扩增的倍数，数值越大表示细胞在一定周期内扩增的次数越多，即扩增得到的细胞数也就越多，斜率代表的是细胞扩增的速率。
从图6可以看出，使用本发明的胃癌原代细胞培养基对上述5例样本进行培养时，扩增至少至80天时细胞扩增速率基本保持不变仍具有继续扩增的能力。
如表1所示，培养5例样本所得平均培养周期是14.4天，扩增得到的平均细胞数是86.87万。
表3 胃癌样本组织培养周期
注：累加细胞倍增数＝3.32*log10(消化后细胞总数/初始种入细胞数)
实施例6与现有培养基培养效果的比较
(1)培养基配制
FM培养基是现有技术常用的培养基，其配方为：DMEM/F12培养基+10％FBS+5μg/ml胰岛素+250ng/ml两性霉素B(购自Selleck公司)+10μg/ml庆大霉素(购自MCE公司)+0.1nM霍乱毒素+0.125ng/ml EGF+25ng/ml氢化可的松+10μM Y27632；
(2)胃癌原代细胞的获取和培养
按照实施例1的步骤(2)之3的方法从术中组织样本(样本16)获得胃癌原代细胞，分别进行有滋养细胞条件的培养和无滋养细胞条件的培养。
在有滋养细胞时，分别使用上述FM培养基和实施例2中的GM-1培养基按照活细胞密度1×104个/cm2接种于48孔板中(每孔1万细胞数)，随后按照细胞密度2×104个/cm2加入经γ射线辐照(辐照剂量30Gy)的NIH-3T3细胞，最后分别使用对应的培养基补齐48孔板中各孔体积至500微升，充分混匀。表面消毒后置于37℃、5％CO2培养箱(购自赛默飞)培养。直至48孔板中细胞长至85％以上，进行传代。
在无滋养细胞时，分别使用上述FM培养基和实施例2中的GM-1培养基按照活细胞密度1×104个/cm2接种于48孔板中(每孔1万细胞数)，再分别使用对应的培养基补齐48孔板中各孔体积至500微升，充分混匀。表面消毒后置于37℃、5％CO2培养箱(购自赛默飞)培养。直至48孔板中细胞长至85％以上，进行传代。
在培养第7天，取出48孔板，使用200微升0.05％胰蛋白酶(购自Gibco公司)润洗1分钟，吸去后再每孔加入250微升0.05％胰蛋白酶(购自Gibco公司)。置于37℃、5％CO2培养箱中反应10分钟，直至显微镜(Invitrogen公司EVOS M500)下能观察到细胞已经消化完全即终止消化。1500rpm离心4分钟后，弃上清，加入1毫升基础培养基重悬，使用流式图像计数仪(江苏卓微生物科技有限公司JIMBIO FIL)进行计数，得到细胞总数，将计数结果示于图7。
根据图7的结果可知，与FM培养基相比，不管有无滋养细胞，GM-1能显著促进胃癌原代细胞扩增，其效果优于现有技术采用的FM培养基，并且，在有滋养细胞的条件下，对于胃癌原代细胞的扩增促进效果更为明显。
实施例7使用本发明培养基扩增得到的胃癌原代细胞用于药物筛选
1、细胞培养和铺板
从得到的胃癌内镜样本(样本17)与实施例1同样地分离得到胃癌原代细胞并使用GM-1培养基进行培养，待细胞扩增至85％，进行消化传代，作为一代。分别取培养第1代、第2代、第3代、第4代、第5代细胞进行药物筛选。
按照实施例1中步骤将细胞消化计数，使用GM-1培养基，将细胞按照活细胞密度4×104个/mL细胞于加样槽(购自康宁公司)中充分混匀后，在384孔不透明白色细胞培养板(购自康宁公司)进行培养，每孔体积50μL，细胞数目为2000个/孔。从孔板边缘加入GM-1培养基封板，板上标注样品名称及CellTiter-Glo(购自Promega公司)检测时间。表面75％酒精(购自利尔康)消毒，置37℃、5％CO2培养箱培养，24小时后加药。
2、筛选药物配制
按照下表配制7个浓度梯度的2种药物(阿糖胞苷、硼替佐米；均购自MCE公司)，在384孔药板(购自赛默飞公司)每孔中添加30μL，-20℃保存待用。
表4 阿糖胞苷、硼替佐米药物添加液的配制
终浓度(μM)
配制浓度(μM)
10
5000
3.33
1666.7
1.11
555.6
0.37
185.2
0.12
61.7
0.04
20.6
0.01
6.9
3、高通量加药
取出配制好的药板，置于室温，待完全融化后置于离心机(Sigma公司3-18K)中室温1000rpm离心1分钟后取出。采用高通量自动化加样系统(Perkin Elmer公司JANUS)进行高通量加药。对培养有胃癌细胞的384孔板在每孔加入0.1μL对应浓度的筛选药物，加药结束后，384孔板表面消毒后移至培养箱中继续培养，72小时后测定细胞活性。
4、细胞活性测试
4℃冰箱取出CellTiter-Glo发光试剂(购自Promega公司)，取10毫升试剂于加样槽中，培养箱中取出待检测384孔板，每孔加入10μL CellTiter-Glo发光试剂，静置10min后使用多功能酶标仪(Perkin Elmer公司Envision)检测。
5、数据处理
按照公式细胞存活率(％)＝加药孔化学发光数值/对照孔化学发光数值*100％，计算得到不同药物作用细胞后的细胞存活率，使用graphpad prism软件计算药物对细胞作用的半数抑制率(IC50)。将结果示于图8。
由图8可以确认，使用本发明的胃癌原代细胞培养基培养得到的胃癌细胞进行药物筛选，相同药物对于培养的不同代数细胞抑制效果基本保持一致(抑制曲线基本保持一致)。
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